Abstract:
Резюме. В експерименті на 79 білих нелінійних щурах вивчена можливість і ефективність застосування желатину сукцинільованого (ЖС) для проведення ін'єкційного ендоскопічного гемостазу. Після лапаротомії в передню стінку шлунка шприцом уводили 0,5 мл розчину. У контрольній групі (35 тварин) використали суміш 0,9 % розчину NaCl та епінефрину гідротартрату (1,8 мг/1 мл) у співвідношенні 1:20. У дослідній групі (35 тварин) – суміш розчину ЖС (40 мг/1000 мл води для ін'єкцій) та епінефрину гідротартрату (1,8 мг/1 мл) у співвідношенні 1:20. Безпосередньо після ін'єкції та через 1, 3, 6, 12 год (після релапаротомії) забирали стінку шлунка для гістологічного дослідження, протягом якого визначали товщину стінки шлунка. Безпосередньо після ін'єкції товщина стінки шлунка в обох групах статистично істотно не відрізнялася. Через 1 год після ін'єкції товщина стінки шлунка статистично істотно збільшилася в обох групах, параметри показників у дослідній групі були значно більшими. Через 3, 6, 12 год товщина стінки шлунка в обох групах зменшувалася. Параметри показників у дослідній групі були значно більшими, ніж у контрольній. Через 12 год у контрольній групі показники майже не відрізнялися від вихідних, а у контрольній були значно, статистично істотно, більшими. Гістологічні дослідження засвідчили, що структура тканин шлунка в обох групах не відрізнялася. Ін'єкція желатину не спричиняла негативну дію на тканини стінки шлунка. Товщина підслизового шару одразу після ін'єкції майже не відрізнялася. Через 12 год у дослідній групі товщина (26,95±5,34 мкм) була більшою, ніж у контрольній (15,45±4,38 мкм, p<0,01). Більшість судин у тварин дослідної групи через 12 год залишаються стиснутими, натомість у контрольній групі їх діаметр збільшується. Це засвідчує, що ЖС можна використати для виконання ін'єкційного ендоскопічного гемостазу в клінічних умовах.
Резюме. Цель исследования. В эксперименте изучить возможность и эффективность применения желатина сукцинилированного (ЖС) для проведения инъекционного эндоскопического гемостаза.
Материал и методы. 70 белых нелинейных крыс. После лапаротомии в переднюю стенку желудка шприцом вводили 0,5 мл раствора. В контрольной группе (35 животных) использовали смесь 0,9 % раствора NaCl и эпинефрина гидротартрата (1,8 мг/1 мл) в соотношении 1:20. В опытной группе (35 животных) - смесь раствора ЖС (40 мг/1000 мл воды для инъекций) и эпинефрина гидротартрата (1,8 мг/1 мл) в соотношении 1:20. Непосредственно после инъекции и через 1, 3, 6, 12 ч, после релапаротомии забирали стенку желудка для гистологического исследования, в котором определяли толщину стенки желудка (ТСЖ).
Результаты. Непосредственно после инъекции ТСЖ у животных обеих групп статистически достоверно не отличалась. Через 1 ч после инъекции ТСЖ статистически достоверно увеличилась в обеих группах, параметры показателей у животных опытной группы были значительно больше. Через 3, 6, 12 ч ТСЖ в обеих группах уменьшалась. Параметры показателей у животных опытной группы каждый раз были значительно больше, чем в контрольной. Через 12 ч в контрольной группе ТСЖ почти не отличалась от исходной, а в опытной была значительно, статистически достоверно, больше. Гистологические исследования показали, что структура тканей желудка в обеих группах не отличалась. Инъекция ЖС не оказывала негативное воздействие на ткани стенки желудка. Толщина подслизистого слоя сразу после инъекции почти не отличалась. Через 12 ч в опытной группе толщина (26,95±5,34 мкм) была больше, чем в контрольной (15,45±4,38 мкм, p<0,01). Большинство сосудов у животных опытной группы через 12 ч оставались сдавленными, а в контрольной группе их диаметр увеличивался.
Выводы. 1. Непосредственно после инъекции в стенку желудка смеси 0,9 % раствора NaCl и эпинефрина и растворной смеси ЖС и эпинефрина ТСЖ не отличается. 2. Через 1 ч после инъекции ТСЖ возрастает, ее параметры после инъекции смеси с ЖС статистически достоверно больше. 3. В дальнейшем, через 3, 6, 12 ч, ТСЖ постепенно уменьшается, ее параметры после инъекции смеси с ЖС каждый раз статистически достоверно больше, в то же время толщина подслизистого слоя и степень сжатия сосудов также существенно больше. 4. Каких-либо негативных изменений структуры тканей желудка после инъекции смеси с ЖС не обнаружено, что позволяет использовать его для выполнения инъекционного эндоскопического гемостаза в клинических условиях.
Abstract. To study the possibility and effectiveness of using succinylated gelatin (SG) for injecting endoscopic hemostasis.
Material and methods. 70 albino non-linear rats. 0.5 ml of the solution has been injected into the anterior wall of the stomach with a syringe after laparotomy. A mixture of 0.9 % NaCl solution and epinephrine hydrothartrate (1.8 mg/1 ml) has been used in a ratio of 1:20 for the control group (35 animals). A mixture of a solution of SG (40 mg/1000 ml of injection water) and epinephrine hydrothartrate (1.8 mg/1 ml) in a ratio of 1:20 for the experimental group (3 5 animals). Right after the injection and in 1, 3,6,12 hours, after laparotomy, the stomach wall has been taken for histological examination, during which the thickness of the stomach wall (TSW) has been determined.
Results. As soon as the injection has been given, the TSW in animals of both groups hasn't differed significantly. The TSW has significantly increased in both of the groups, and the parameters of indicators in the experimental group have significantly raised in 1 h after the injection. In 3, 6, and 12 hours, the TSW in both groups has been decreasing. The parameters of indicators in the experimental group of animals have been significantly higher than in the control one all the time during the study. The indicators have barely differed from the initial ones in the control group 12 hours later, whereas in the experimental one they have been significantly higher. Histological studies have shown that the structure of stomach tissues in both groups hasn't varied. The SG injection has not caused any negative effects on the tissues of the stomach wall. The thickness of the submucosa hasn't been much modified right after the injection. The thickness (26.95±5.34 microns) has increased in the experimental group 12 hours later than in the control one (15.45±4.38 microns, p<0.01). Most of the vessels of the experimental group have remained compressed 12 hours later, whereas the diameter of the vessels of the control group has been growing.
Conclusions. 1. The TSW hasn't differed right after the injection (a mixture of 0.9 % NaCl and epinephrine solution and a mixture of SG and epinephrine solution) into the stomach wall. 2. 1 h later after the injection, the TSW has increased and its parameters after injection of a mixture with SG have been significantly higher. 3. In 3, 6, 12 h and later on, the TSW has been gradually reducing and its parameters after injection of a mixture with SG have been significantly higher each time. The thickness of the submucosa and the degree of compression of the vessels have also been considerably higher. 4. No negative changes in the structure of stomach tissues after injection of the mixture with SG have been detected. This allows it to be used for performing endoscopic hemostasis by injection therapy in clinical conditions.